為什么你的elisa檢測結果不理想？您知道原因所在嗎？

為什么你的elisa檢測結果不理想？

　　elisa作為經典的免疫檢測方法，看起來很平常，然而真正做好它并不容易。有哪些方法可以借鑒呢？我們總結了幾點：

　　1. 確定您的樣本類型和試劑盒可以兼容

　　常見樣本類型有血清，血漿，細胞培養上清，如果是**實驗驗證過的，可根據產品說明購買使用。【注意：血漿制備用到的抗凝劑有 EDTA、檸檬酸鹽、肝素等多種，相應的血漿性質存在差異，需單獨確認兼容性】。

　　2. 試劑盒檢測范圍需要匹配樣本中標志物濃度

　　elisa試劑盒的定量檢測范圍需參考標準曲線，在標準曲線最低和最高濃度區間內屬于線性范圍，其中的值是可信和可定量的。濃度高于線性范圍的樣品要稀釋到線性范圍內來測量，而濃度低于線性范圍的樣品，其測量值不能用于計算濃度，只能用做參考。有一種常見的相關情況是：健康人樣本中很多標志物的濃度偏低，測量值低于標準曲線最低值。

　　3. 樣本收集有講究

　　以血清為例，樣本收集可參考試劑盒說明書，但需注意以下要點。樣本盡量用無菌管收集，避免細菌的酶類和代謝產品對結果的影響。采集過程要避免溶血，因為紅細胞溶解釋放的活性物質可能會影響檢測。保存過程中如有沉淀，應離心后取上清液。樣本若不立即測定，建議按照每次使用量分裝保存在 -20℃，每次檢測使用一管，即避免交叉污染和反復凍融，有能保證檢測結果的平行可比性。

　　4. 實驗前要準備好相應試劑

　　提前將所有試劑平衡到室溫環境，這個過程大致需半小時左右。洗液是濃縮液，如有結晶析出，需完全溶解后再進行稀釋。A、B 兩管顯色底物在使用前15分鐘按 1:1 配成混合液。為保證蛋白標準品溶液配制質量，蛋白標準品為凍干粉，重溶前需將管子離心，加入說明書指定的緩沖液，慢速在搖床上搖勻或顛倒混勻，至少 15 分鐘，不建議用槍頭吹打。溶解后如需保存，按每次使用量分裝后根據說明書要求的溫度保存。梯度稀釋蛋白標準品時，建議用聚丙烯管（對蛋白吸附力很低），每步都要充分混勻且更換新槍頭，確保梯度準確性。

　　5. 儀器設備的準備也必不可少

　　相關設備包括移液器、洗板機/搖床和酶標儀。移液器的準確性對于ELISA實驗結果的可靠性十分關鍵，需要確保定期校準維護。搖床的使用是為了讓反應體系快速達到平衡，獲得穩定、可重復的結果。不用搖床對實驗通常的影響是，OD 值低，CV 大。酶標儀等設備使用前提前 15 分鐘開機預熱。

　　6. 剩余的試劑盒材料要妥善保存

　　標準品分裝后按說明書要求的溫度保存，這樣可以避免污染，對要求冷凍保存的標準品還可以避免反復凍融；酶標板放回錫箔紙袋，加入干燥劑，封緊封口，4℃保存。忌未將酶標板完全平衡至室溫，就放回錫箔紙袋，因為此時由于溫度差，酶標板上會有水汽，不利于穩定保存。

　　7. 預實驗：通常預實驗包括全部標準曲線和小量樣本。

　　預實驗有兩個主要目的，一來是熟悉實驗流程，發現可能忽略的問題；二來是測試樣本和試劑盒是否匹配，一旦出現不匹配的情況，不至于浪費過多樣本。另外是對樣品中目的分析物的豐度作一下大致了解，以確定合適稀釋度。

　　8. 孵育時要保證溫度均勻，防止揮發變干

　　孵育時壓緊封口膜。多塊板一起實驗時，要平放各板，不要疊放，以免因溫度不均造成漂移或邊緣效應。

　9. 加樣要快速準確，避免氣泡

　　加樣時間宜控制在 15 分鐘內。加樣前要將樣本混勻，特別是凍存后融化的樣本（自然融化的血清等樣本會有分層現象），應上下顛倒充分混勻，注意動作輕緩，避免產生氣泡。如凍存融化后的樣本有沉淀，可以再次離心。整個加樣過程都要注意避免產生氣泡。氣泡會影響蛋白的相互結合，而影響反應進行。

　10. 手動洗板的操作指南

　　加洗液要快速，沒有多道移液器可以使用洗瓶。洗液應新鮮配制，以免被其他試劑污染，或染菌。加好洗液后浸泡 30s-1min。甩板倒液要迅速干脆。倒液后在吸水紙上拍板，選用無粉塵和碎屑的優質吸水紙。需要用力拍板，使孔內沒有可見液體掛壁；但也不能太重，不能讓樣品干太久。酶標板拍干后立即做后續的加液。

　　11. 顯色反應的關鍵點

　　elisa試劑盒實驗是個酶促底物顯色反應，隨時間增加，顯色變深，所以選擇**時間終止反應是得到準確的標準曲線和樣本濃度的重要因素。終止過程要完全。使用的 TMB 底物時完全終止點是黃色，不會有任何程度的藍色或綠色，終止過程中必要時可以震蕩 96 孔板，或用槍頭抽吸混勻（終止液含強酸，避免腐蝕）。